بهداشت و بیماری‌های عفونی دام

بهداشت و بیماری‌های عفونی دام

تشخیص مولکولی لپتوسپیراهای بیماری‌زای سگ با استفاده از روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانشگاه لرستان دانشکده دامپزشکی
2 دانشجو دکتری تخصصی بیماری‌های داخلی دام‌های بزرگ، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
چکیده
زمینه و هدف: این مطالعه به‌منظور بررسی میزان شیوع لپتوسپیرا در سگ‌های ولگرد خرم‌آباد با استفاده از تکنیک PCR انجام‌ شده است. لپتوسپیروز بیماری باکتریایی زئونوز و مشترکی بین انسان و دام، با انتشار جهانی است و طیف گسترده‌ای از پستانداران اهلی و وحشی، ازجمله گاو، گوسفند، بز، سگ، خوک، شتر و غیره و انسان درگیر می‌کند. مخازن اصلی بیماری جوندگان و حیوانات نیمه‌وحشی حومۀ شهرها و روستاها، ازجمله سگ است.
مواد و روش ها: برای انجاماین مطالعه که در بازۀ زمانی 98-99 انجام گرفت، تعداد 60 نمونه خون از سگ‌های ارجاعی گرفته شد. نمونه‌ها تا زمان انجام آزمایشات مولکولی در فریزر نگهداری شد. برای انجام استخراج DNA از نمونه‌ها، از کیت استخراج DNA شرکت فاورژن، تایوان استفاده شد. به‌منظور ردیابی مولکولی لپتوسپیرا از پرایمرها ژن‌های 16S rRNA و LipL32 استفاده شد.
یافته ها: از مجموع 60 نمونه خون مطالعه‌شده تعداد 6 نمونه (10درصد) آلوده به باکتری لپتوسپیرا بود.
نتیجه گیری: نتیجه‌گیری؛ با توجه به اینکه تاکنون هیچ مطالعه‌ای درزمینۀ لپتوسپیروز در سگ‌ها در منطقۀ خرم‌آباد انجام ‌نشده است؛ این مطالعه می‌تواند گام مهمی در جهت تعیین میزان شیوع لپتوسپیروز در این منطقه باشد. توصیه‌های بهداشتی در جهت واکسیناسیون سگ‌ها برای پیشگیری از انتقال بیماری به انسان به ادارۀ دام‌پزشکی منطقه ارائه شود. موقعیت ویژۀ استان لرستان و ورود و خروج نامنظم دام و قاچاق آن‌ها به کشورهای هم‌جوار و قرنطینه نکردن دام‌ها ضروری به نظر می‌رسد تا مطالعۀ جامعی درزمینۀ میزان شیوع لپتوسپیرا در استان لرستان و به‌خصوص شهرستان خرم‌آباد با در نظر گرفتن همۀ ابعاد انجام گیرد.
کلیدواژه‌ها
موضوعات

عنوان مقاله English

Molecular detection of canine pathogenic leptospira using polymerase chain reaction method

نویسندگان English

Shabnam anari 1
Shahriyar Mehrabi 2
1 Lorestan University.Faculty of veterinary Medicine
2 DVSc Graduate of Larg Animal Internal Medicine, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahavz, Iran
چکیده English

Background and Aim: This is an overview of the prevalence of Leptospira in Khorramabad using PCR technique. Leptospirosis is a common bacterium that is common among humans and has a wide range of domestic and wild species (cows, sheep, goats, horses, pigs, goats, etc.). And humans are involved. The main reservoirs of the disease are rodents and semi-wild animals in the suburbs and villages, including dogs.
Materials and Methods: In order to carry out this study, which was carried out in the period of 2008-2009, 60 blood samples were taken from referred dogs. The samples were kept in the freezer until molecular tests were performed. To perform DNA extraction from the samples, the DNA extraction kit of Fargen company, Taiwan was used.
Results : 16S rRNA and LipL32 gene primers were used for molecular tracking of Leptospira. Out of a total of 60 blood samples studied, 6 samples (10%) were infected with Leptospira bacteria.
Conclusion: Considering that no study has been conducted on leptospirosis in dogs in Khorramabad region, so this study can be an important step towards determining the prevalence of leptospirosis in this region. Health recommendations to vaccinate dogs to prevent disease transmission to humans should be submitted to the regional veterinary department. The special situation of Lorestan province and the irregular entry and exit of livestock and their smuggling to neighboring countries and the lack of quarantine of livestock seem to be necessary to conduct a comprehensive study on the prevalence of Leptospira in Lorestan province and especially Khorramabad city. Consider all dimensions.

کلیدواژه‌ها English

Leptospirosis
Khorramabad region
Dog
polymerase chain reaction
1)       James S., Sthian B., Teijlingen E. Outbreak of Leptospirosis in Kerala. Nepal Journal Epidemiology. 2018;8(4):745-747.
2)       Tarantola A, Goarant C. Leptospirosis in Franch Historical Medical Literature: Welis Disease or Kelschs Disease? Am Journal Med Hyg, 2018;99(6);1366-1368.
3)       Selvarajah S., Ran, S., Roberts, N.W. Leptospirosis in pregnancy: Asystematic review. PLoS neglected Tropical Diseases, 2021;15(9).
4)       Fearnely, C., Wakeley, p.,Beltran, J., Dalley, C., Williamson, S., Gaudie, C. and Woodward, M. The development of a real-time PCR to detect pathogenic Leptospira species in kidney tissue. Research in Veterinary Science, 2008;85: 8-16.
5)       Negbede, E., Raji, M., Kwanashie, N., Okolocha, E., Maurice, N., Akange, E., and Odeh, L. Leptospirosis among zebu cattle in farms in Kaduna state, Nigeria. Asian Pacific Journal of Tropical Disease, 2012;12:367-369.
6)       NicolinoI, R. R., et al. Prevalence and spatial analysis of antileptospiral agglutinins in dairy cattle-Microregion of Sete Lagoas, Minas Gerais, 2009/2010. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 2014, 66: 648-654.
7)       Rahman, M.S.A. et al. 2020. Detection and characterisation of Leptospira spp. in dogs diagnosed with kidney and/or liver disease.
8)       Renan Domingos FM., Vieira, L., Romero, EC., Gonçales, AP. “Features of two proteins of Leptospira interrogans with potential role in host-pathogen interactions”. BMC Microbiology, 2012;12(50):1-16.
9)       Selvarajah S., Ran, S., Roberts, N.W. Leptospirosis in pregnancy: Asystematic review. PLoS neglected Tropical Diseases, 2021;15(9).
10)   Shah, I. and Katira B. 2007. Clinical and laboratory profile of dengue, leptospirosis and malaria in children: a study from Mumbai. Arch Dis Child, 92:561-568.
11)   Shanahan, L. and Slovis, N. Leptospira interrogans associated with hydrallantois in 2 pluriparous Thorobred mares. J Vet Intern Med, 2011;25: 158-161.
12)   Shearer, K., Harte, M., Ojkic, D., Delay, J. and Campbell, D. Detection of Leptospira spp. in wildlife reservoir hosts in Ontario through comparison of immunohistochemical and polymerase chain reaction genotyping methods. Can Vet J, 2014;55: 240-248.
13)   Tarantola A, Goarant C. Leptospirosis in Franch Historical Medical Literature: Welis Disease or Kelschs Disease? Am Journal Med Hyg, 2018;99(6);1366-1368.
14)   Torkan S., Momtaz, H. Molecular detection of leptospir species serotypes in Iranina stry Doga. International Journal of Medical Laboratory, 2019;6(2):138-144.
15)   Vidigal, F., Vera-Tome, A., Nogales-Munoz, N., Garcia, M. and Munoz-Sanz, A. Leptospirosis in South-western Spain . Revista Clínica Española, 2014;214: 247-252.
16)   Vijayachari, P., Sugunan, A., sharma,S., Ray, S., Natarajaseenivasan, K. and Sehgal, K. Leptospirosis in the Andaman Islands, India. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 2008;102: 117-122.
17)   Wagenaar, J., Zuerner, L., Alt, D. and Bolin, C. Comparison of polymerase chain reaction assays with bacteriologic culture, immunofluorescence, and nucleic acid hybridization for detection of Leptospira borgpetersenii serovar hardjo in urine of cattle. AJVR, 2000;61: 316-320.
18)   WHO. Leptospirosis worldwide. Wkly Epidemiol Rec, 1999;74: 237-242.
19)   Xu, C., Loftis, A., Ahluwalia, K., Gao, D., verma, A., Wang, C. and Kaltenboeck, B. Diagnosis of Canine Leptospirosis by a Highly Sensitive FRET-PCR Targeting the lig Genes. PLOS ONE, 2014;9: 110-119.
20)   Yadeta, Waktole, G.M, Bashahun. Leptospirosis in animal and its public health implicaitons: Areview. World Applied Sciences Journal, 2016;34(6):845-853.
21)   Yanagawa, R. Animal leptospirosis. Kagaku Ryoho no Ryoiki, 1992;8: 673–678.
22)   Yang, C., Wu, M. and Pan, M. Leptospirosis renal disease. Nephrol Dial Transplant, 2001;16: 73-77.
23)   Yanagihara,Y.,Sharon,Y.,Villanueva, M.,Nomura, N.,Sekiya, S.,Handabile, C.,Masashi Shingai. Leptospira Is an Environmental Bacterium That Grows in Waterlogged Soil. Environmental Microbiology, 2022;10(2):1-9.