بررسی فنوتیپی میزان شیوع مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری اشرشیاکلی جدا شده از مدفوع شتر های سالم مشهد

سالاری, سارا; امیری, محدثه; فرزین, حمیدرضا; جمشیدیان مجاور, مجید

doi:10.22034/jahid.2024.713634

بررسی فنوتیپی میزان شیوع مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری اشرشیاکلی جدا شده از مدفوع شتر های سالم مشهد

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

سارا سالاری ¹

محدثه امیری ²^{، 3}

حمیدرضا فرزین ⁴

مجید جمشیدیان مجاور ⁴

¹ دانشکده دامپزشکی ، دانشگاه آزاد دامغان

² دانشجوی دکتری تخصصی باکتری شناسی دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید باهنر کرمان.

³ بخش تحقیقات، موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، شعبه مشهد، ایران.

⁴ موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، شعبه مشهد، ایران.

10.22034/jahid.2024.713634

چکیده

باکتری اشریشیاکلی، که به طور طبیعی از دستگاه گوارش انسان و حیوان جداسازی می شود، از مهم ترین اعضای میکروبیوتا (فلور طبیعی) این دستگاه محسوب شده و فرم بیماری زای آن ایجاد کننده ی عوارض بسیار مهمّی در انسان و حیوان می باشد سویه های بیماری زا به دو گروه پاتوژن های روده ای و خارج روده ای تقسیم می شوند. هدف این مطالعه تعیین میزان مقاومت و حساسیت باکتری اشریشیاکلی جدا شده از شتر های سالم می باشد
در این مطالعه 26 سوآب معقدی از شتر های سالم شهرستان مشهد جمع آوری شد. سواب های مقعدی بر روی محیط کشت مک کانکی آگار کشت داده شدند و جدایه های بدست آمده توسط تست های بیوشیمیایی مورد تایید قرار گرفتند. بررسی میزان مقاومت و حساسیت جدایه ها با روش دیسک دیفیوژن انجام گردید.
نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد که بیشترین میزان مقاومت جدایه های مورد مطالعه مربوط به آنتی بیوتیک پنی سیلین به میزان 46/88 درصد بوده و آنتی بیوتیک های استرپتومایسین (38/15 درصد)، آموکسی سیلین (53/11 درصد) و جنتامایسین (69/7 درصد) بعد از آن قرار داشتند.
نتایج حاصل از این مطالعه نشان می دهد که روش دیسک دیفیوژن آگار می تواند بـه عنـوان یـک روش غربـال گری اولیه برای تعیین حساسیت و مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری اشریشیاکلی نسبت به انتی بیوتیک های گوناگون استفاده گردد.
نتایج حاصل از این مطالعه نشان می دهد که روش دیسک دیفیوژن آگار می تواند بـه عنـوان یـک روش غربـال گری اولیه برای تعیین حساسیت و مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری اشریشیاکلی نسبت به انتی بیوتیک های گوناگون استفاده گردد.

کلیدواژه‌ها

اشریشیاکلی

فلور طبیعی

مقاومت آنتی بیوتیکی

شتر

موضوعات

باکتری شناسی

عنوان مقاله English

Phenotypic evaluation of antibiotic resistance prevalence of Escherichia coli isolated from feces of healthy camels in Mashhad

نویسندگان English

sara Salari ¹

mohadese amiri ² ³

hamidreza farzin ⁴

Majid Jamshidian Mojaver ⁴

¹ Damghan Faculty of Veterinary Medicine

² PhD Student of Bacteriology, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Bahonar University of Kerman .

³ Mashhad Branch, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization

⁴ Mashhad Branch, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Mashhad, Iran

چکیده English

Escherichia coli, which is naturally isolated from the gastrointestinal tract of humans and animals, is one of the most important members of the microbiota (natural flora) of this system and its pathogenic form can cause very serious complications in humans and animals. The germs are divided into two groups of intestinal and extra-intestinal pathogens. The aim of this study was to determine the resistance and susceptibility of Escherichia coli isolated from healthy camels.
In this study, 26 intestinal swabs were collected from healthy camels in Mashhad. Anal swabs were cultured on MacConkey agar medium and the isolates were confirmed by biochemical tests. The resistance and susceptibility of the isolates were determined by disk diffusion method.
The results of this study showed that the most resistant isolates were penicillin antibiotic (88.46%) and streptomycin (15.38%), amoxicillin (11.53%) and gentamicin. (7.69%) followed.
The results of this study indicate that disk diffusion agar method can be used as a primary screening method to determine the sensitivity and antibiotic resistance of Escherichia coli to various antibiotics

کلیدواژه‌ها English

Escherichia coli

natural flora

Antibiotic resistance

camel

1. Synge BA. Veterinary significance of verocytotoxin-producing Escherichia coli O157. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2000;16(8):725-32.

2. Sheng H, Davis MA, Knecht HJ, Hovde CJ. Rectal administration of Escherichia coli O157: H7: novel model for colonization of ruminants. Applied and environmental microbiology. 2004;70(8):4588-95.

3. Kaper JB, Nataro JP, Mobley HL. Pathogenic Escherichia coli. Nature reviews microbiology. 2004;2(2):123-40.

4. Jamshidian-Mojaver M, Amiri M, Farzin H. Phenotypic and genotypic evaluation of fluoroquinolones resistance in Klebsiella pneumoniae isolates from urinary tract infections in Bojnourd city. medical journal of mashhad university of medical sciences. 2020 Jul 22;63(3):2335-40.

5. Amiri M, Jajarmi M, Ghanbarpour R. Prevalence of resistance to quinolone and fluoroquinolone antibiotics and screening of qnr genes among Escherichia coli isolates from urinary tract infection. Int J Enteric Pathog. 2017;5(4):100-5.

6. Farzi S, Ranjbar R, Niakan M, Ahmadi MH. Molecular characterization of antibiotic resistance associated with TEM and CTX-M ESBL in uropathogenic E. coli strains isolated from outpatients. Iranian Journal of Pathology. 2021;16(4):386.

7. Ghanbarpour R, Daneshdoost S. Identification of shiga toxin and intimin coding genes in Escherichia coli isolates from pigeons (Columba livia) in relation to phylotypes and antibiotic resistance patterns. Tropical animal health and production. 2012;44:307-12.

8. Girardeau JP, Dalmasso A, Bertin Y, Ducrot C, Bord S, Livrelli V, Vernozy-Rozand C, Martin C. Association of virulence genotype with phylogenetic background in comparison to different seropathotypes of Shiga toxin-producing Escherichia coli isolates. Journal of clinical microbiology. 2005;43(12):6098-107.

9. Wayne PA. Clinical and laboratory standards institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing.

10. Trabulsi LR, Keller R, Gomes TA. 10.321/eid0805. Typical and Atypical Enteropathogenic Escherichia coli. Emerging infectious diseases. 2002;8(5):508.

11. Davis MA, Besser TE, Orfe LH, Baker KN, Lanier AS, Broschat SL, New D, Call DR. Genotypic-phenotypic discrepancies between antibiotic resistance characteristics of Escherichia coli isolates from calves in management settings with high and low antibiotic use. Applied and environmental microbiology. 2011 15;77(10):3293-9.

12. Lee JC, Oh JY, Cho JW, Park JC, Kim JM, Seol SY, Cho DT. The prevalence of trimethoprim-resistance-conferring dihydrofolate reductase genes in urinary isolates of Escherichia coli in Korea. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2001 1;47(5):599-604.

13. Bonyadian M, Moshtaghi H, Behroozi P. Occurrence of verotoxigenic E. coli in cow feces and antimicrobial resistance of the isolates in cattle farms in Shahrekord area. Biological Journal of Microorganism. 2017 23;6(23):75-84.

14. Hasona IF, Helmy SM, El Gamal AM. Prevalence, virulence factors, and antimicrobial resistance profiles of Shiga toxin-producing Escherichia coli isolated from broiler chickens in Egypt. InVeterinary Research Forum 2023 (Vol. 14, No. 3, p. 131). Faculty of Veterinary Medicine, Urmia University, Urmia, Iran.

15. Naderi Z, Ghanbarpour R, Sami M. Antimicrobial resistance characteristics and phylogenetic groups of Escherichia coli isolated from diarrheic calves in southeast of Iran. Int J Enteric Pathog. 2016;4(4):1-7.