بهداشت و بیماری‌های عفونی دام

بهداشت و بیماری‌های عفونی دام

جستجوی ژنومی کوکسیلا بورنتی در نمونه‌های شیر گاو استان لرستان براساس ژن ترانسپوزونی IS1111

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
مریم نجفی اصل 1
شهریار مهرابی 2
1 دانشجو دکتری تخصصی باکتری شناسی، گروه پاتوبیولوژی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
2 دانشجو دکتری تخصصی بیماری‌های داخلی دام‌های بزرگ، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
10.22034/jahid.2024.711054
چکیده
مقدمه و هدف: مطالعه حاضر با هدف جستجوی مولکولی کوکسیلا بورنتی در نمونه‌های شیر خام جمع‌آوری شده از گاوها در استان لرستان انجام شده است. روش کار: این بصورت مقطعی و توصیفی انجام شده است. تعداد کلی 200 نمونه شیر به طور تصادفی از گله‌های گاوداری-های سنتی متعلق مناطق (خرم‌آباد و پلدختر) استان لرستان، جمع‌آوری شد. نمونه‌های شیر در فصل زمستان سال 1400 جمع‌آوری و همچنین سن حیوانات ثبت گردید. از همه نمونه‌های شیر DNA استخراج شد. سپس برای تشخیص کوکسیلا بورنتی براساس ژن ترانسپوزونی IS1111 از واکنش Nested-PCR استفاده شد. همچنین جهت آنالیز آماری از نرم‌افزار SPSS و روش کای دو مربع استفاده گردید.
یافته‌ها: نتایج: نتایج بدست آمده از تکثیر ترانسپوزونی IS1111 نشان داد که 5 درصد (95 درصد CI: 55- 7/0 درصد) از نمونه‌های شیر مورد بررسی، از نظر بار میکروبی کوکسیلا بورنتی مثبت بودند. مشخص گردید که بین سن گاو با دفع کوکسیلا بورنتی از طریق شیر گاوان استان لرستان ارتباط معنی‌داری وجود دارد (05/0>p) داشت. نتیجه‌گیری: براساس یافته‌های این مطالعه می‌توان به این نتیجه رسید که شیر گاو می-تواند به عنوان یکی از منابع مهم در انتقال باکتری کوکسیلا بورنتی به میزبان‌های بعدی در نظر گرفته شود. بنابراین، به دلیل ماندگاری بالای کوکسیلا بورنتی به علت وجود فرم شبه اسپور، خطر انتقال کوکسیلا بورنتی از طریق شیر خام و محصولات لبنی پاستوریزه نشده قابل اغماض نیست. بنابراین، شیر گاو باید به عنوان یک عامل مهم در اپیدمیولوژی تب کیو و سلامت عمومی در منطقه مرکزی استان لرستان در نظر گرفته شود.واژگان کلیدی: شیر، ژن ترانسپوزونی، واکنش زنجیره‌ای پلیمراز آشیانه‌ای، کوکسیلا بورنتی
کلیدواژه‌ها
"شیر"
"ژن ترانسپوزونی
" "واکنش زنجیره‌ای پلیمراز آشیانه‌ای"
"کوکسیلا بورنتی"
موضوعات

عنوان مقاله English

Genomic Detection of Coxiella burnetii in Cow's Milk Samples of Lorestan Province based on IS1111 transposon Gene

نویسندگان English

Maryam Najafi Asl 1
Shahriyar Mehrabi 2
1 Ph.D Student Department of Pathobiology, Faculty of Veterinary Medicine, Ferdowsi University of Mashhad, Iran
2 DVSc Graduate of Larg Animal Internal Medicine, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahavz, Iran
چکیده English

ABSTRACT

Background and Aim: The present study was conducted with the aim of molecular search for Coxeillaburnetii in raw milk samples collected from cows of Lorestan province.
Materials and Methods: This is a cross-sectional and descriptive studyin which 200 milk sampleswere randomly collected from the herds of traditional cattle farms belonging to two cities (Khorramabad and Poldakhtar) of Lorestan province. Collecting milk samples and recording the age of animals was done in the winter of 1400. The process of DNA extraction from all milk samples was also done. Then, Nested-PCR reaction was used to detect C. burnetii based on the IS1111 transposon gene. Also, SPSS software and Chi-square method were used for statistical analysis.
Results:. The results obtained from amplification of the IS1111 transposon geneshowed that 5% (95% CI: 0.7-55%) of the milk samples were positive for C. burnetii microbial load. It was found that there is a significant relationship between the age of the cow and the excretion of C. burnetii through the cow milk in Lorestan province (p<0.05).
Conclusion:. Based on the findings of this study, it can be concluded that cow's milk can be considered as one of the important sources in the transmission of C. burnetii bacteria to the next hosts. Therefore, because of the long shelf life of C. burnetii due to the presence of the pseudospore form, the risk of transmission of C. burnetii through raw milk and unpasteurized dairy products cannot be ignored. Therefore, cow's milk should be considered as an important factor in the epidemiology of Q fever and public health in the central region of Lorestan province.

کلیدواژه‌ها English

Milk
Transposon gene
Nested-PCR
Coxiella burnetii
  1. Sarbazi M, et al., 2015. Effect of pasteurization and packaging on the physicochemical and sensory properties of pot (kope) cheese. Journal of Food Research, 507-517.
  2. Raoult D,2012. Chronic Q fever: expert opinion versus literature analysis and consensus. Journal of Infection, 65(2):102-8.
  3. Parisi A, et al.,2006. Diagnosis of Coxiella burnetiirelated abortion in Italian domestic ruminants usin single-tube nested PCR. Veterinary microbiology,118.1-2: 101-106.
  4. Philip CB,1948. Comments on the name of the Q fever organism. Public Health Reports,63 (2).
  5. Hirai A, et al., 2012 Development of a method for detecting Coxiella burnetii in cheese samples. Journal of Veterinary Medical Science, 74(2):175-80.
  6. Reichel R, et al.,2012.Description of a Coxiella burnetii abortion outbreak in a dairy goat herd, and associated serology, PCR and genotyping results. Research in veterinary science, 
  7. Rozental T, et al.,2020.First molecular detection of Coxiella burnetii in Brazilian artisanal cheese: a neglected food safety hazard in ready-to-eat raw-milk product. Brazilian Journal of Infectious Diseases24:208-12.
  8. KHalili M, et al., 2010.Q fever a forgotten disease in Iran. Journal of Kerman University of Medical Sciences, 17(1):93-7.
  9. Rahimi E, et al., 2010. An assay to determine the seasonal prevalence of Coxiella burnetii in cow milk using nested PCR. Journal of Microbial World, 3(1):56-62.
  10. Khanzadi S, et al., 2014.Identification of Coxiella burnetii by touch-down PCR assay in unpasteurized milk and dairy products in North-East of Iran. Iranian Jouranl of Veterinary Medicine, 8:15-9.
  11. Khademi P, et al., 2014.Genomic detection of Coxiella burnetii in goat milk samples in animal farms Khorramabad Township, Iran. Pajoohandeh Journal, 19(3):162-8.
  12. Muskens J, et al., 2011. Prevalence of Coxiella burnetii infection in Dutch dairy herds based on testing bulk tank milk and individual samples by PCR and ELISA. Veterinary Record, 168(3):79-79.
  13. Öngör H, et al., 2004. Detection of Coxiella burnetii by immunomagnetic separation-PCR in the milk of sheep in Turkey. Veterinary record, 154(18):570-2.
  14. Loftis AD, et al., 2010. Detection of Coxiella burnetii in commercially available raw milk from the United States. Foodborne pathogens and disease, 7(12):1453-6.
  15. Cerf O, Condron R, 2006. Coxiella burnetii and milk pasteurization: an early application of the precautionary principle? Epidemiology & Infection, 134(5):946-51.
  16. Kim SG, et al., 2005. Coxiella burnetii in bulk tank milk samples, United States. Emerging infectious diseases, 11(4):619.
  17. Maurin M, Raoult Df. 1999. Q fever. Clinical microbiology reviews,12(4), 518-553.
  18. Rahimi E, et al., 2010. An assay to determine the seasonal prevalence of Coxiella burnetii in cow milk using nested PCR.
  19. Rodolakis A, et al., 2007. Comparison of Coxiella burnetii shedding in milk of dairy bovine, caprine, and ovine herds. Journal of dairy science, 90(12):5352-60.
  20. Guatteo R, et al., 2006. Shedding routes of Coxiella burnetii in dairy cows: implications for detection and control. Veterinary Research, 37(6):827-33.
  21. Eldin C, et al., 2013. Coxiella burnetii DNA, but not viable bacteria, in dairy products in France. The American journal of tropical medicine and hygiene, 88(4):765-9.
  22. Esmaeili S, et al., 2019. Molecular prevalence of Coxiella burnetii in milk in Iran: a systematic review and meta-analysis. Tropical Animal Health and Production, 51(6):1345-55.
  23. Khademi P, et al., 2019. Prevalence of Coxiella burnetii in milk collected from buffalo (water buffalo) and cattle dairy farms in Northwest of Iran. Comparative Immunology Microbiology Infectiuos Diseases, 67:101368.
  24. Khademi P, et al., 2020. Prevalence of C. burnetii DNA in sheep and goats milk in the northwest of Iran. International Journal of Food Microbiology, 108716.
  25. Nokhodian Z, et al., 2017. Epidemiology of Q fever in Iran: a systematic review and meta-analysis for estimating serological and molecular prevalence. Journal of research in medical sciences: the official journal of Isfahan University of Medical Sciences, 22.
  26. Etemadfar L, et al., 2015. Genomic Detection of Coxiella burnetii in Raw and Unpasteurized Cow Milk of Traditional domestic dairy products Vendors in Khorramabad, Lorestan Province in 2015. Yafte,19(2):1-5.
  27. Sting R, et al., 2013. Quantitative real-time PCR and phase specific serology are mutually supportive in Q fever diagnostics in goats. Veterinary microbiology, 167(3-4):600-8.
  28. Rozental T, et al., 2020. First molecular detection of Coxiella burnetii in Brazilian artisanal cheese: a neglected food safety hazard in ready-to-eat raw-milk product. Brazilian Journal of Infectious Diseases, 24(3):208-12.
  29. Jaydari A, et al., 2019. Engineering cloning and expression of interleukin 2-Com1 chimera with aim of recominant subunit vaccine production against Coxiella burnetii. International Journal of Peptide Research and Therapeutics, 25:1127-1133.
  30. Lorestani S., et al., 2015. Genomic detection of Coxiella burnetii in sheep milk samples by NestedPCR method in Khorramabad, Iran. Journal of food science and technology (Iran), 13(56):165-171